Растворы анестетиков обычно хранят не более трех дней. Для кратковременной наркотизации используют следующие анестетики в соответствующих концентрациях: амилен-гидрат (7—13 г/л), гидрохлорид-2-метил-4-винилоксихинолин (10–20 мл/л), комбелен (0,1–0,2 мл/л), метилпентанол (0,5–1 мл/л), метилпаратимол (2–4 мл/л), бикарбонат натрия (0,4–0,6 г/л), пропоксат (3–4 мл/л), пропоксимол (0,05— 0,4 мл/л), третичный амиловый спирт (0,25—0,5 мл/л), третичный бутиловый спирт (0,3–3,5 мл/л), трибромэтанол (5—50 мл/л), трикаин-метансульфонат (MS-222) (0,13— 0,26 г/л), трихлорбутанол (0,25—0,4 г/л), СО2 (0,2–0,4 г/л), хинальдин (5—12 мг/л), хинальдин-гидрохлорид (25 мг/л), хлоралгидрат (20–30 г/л), хлорэтон (0,2–0,4 г/л), эвгенол (100 мг/л), серный эфир (17,2 мг/л), уретан (0,5–1 мг/л).
Для приготовления раствора хильнальдина 0,1 мл его маслянистой жидкости растворяют в 1–2 мл этилового спирта или ацетона, после чего смесь выливают в емкость с 4,5–6 л воды.
Продолжительность нахождения рыбы в растворе хинальдина не должна превышать 10 мин.
При перевозке рыбы на небольшие расстояния в качестве анестетика используют: для морских рыб — амобарбитал в концентрации 105–130 мг/л, для пресноводных рыб— амиленгидрат (0, 5–1, 25 мл/л), хлоралгидрат (2,3–3,1 г/л) или трикаин-метансульфонат (MS-222) (10–25 мг/л). Реакцию воды стабилизируют бикарбонатом натрия (150 мг/л). Плотность посадки рыбы при наркотизации можно увеличить в 2–3 раза относительно нормы.
Хорошие результаты при перевозке рыб в течение 6–8 ч дает использование смеси анестетиков: менокаина и хинальдина по 10 мг/л. Эта смесь обладает малой размерной и видовой специфичностью действия и может использоваться для перевозки как пресноводных, так и морских рыб.
Обесклеивание икры обычно осуществляют при инкубации ее в аппаратах Вейса или их аналогах (перевернутых бутылках без донышка, где икра инкубируется за счет подачи воды снизу через горлышко). Обычно таким образом инкубируют большие количества икры золотой рыбки, орфы, цветного карпа-кои.
Оболочка клейкой икры состоит из двух слоев: жесткого, внутреннего, — первичная оболочка (Zona radiata) и наружного, клейкого, — хориона (chorion). Обесклеивание осуществляется двумя способами: разрушением наружного слоя и опудриванием клейкого хориона.
Для растворения яйцевой оболочки используют 1 %-ный раствор трипсина, приготовленный на фосфатном буфере с рН 7,4–7,5. Икру выдерживают в этом растворе несколько минут до потери клейкости и промывают водой. Можно для этих же целей использовать 1 %-ный раствор проназы.
Хорошо растворяется клейкий слой икры при выдерживании в растворе гиалуронидазы, ферменте сперматозоидов, за счет которого они растворяют оболочку яйцеклетки млекопитающих и оплодотворяют ее. Гиалуронидазу можно получить, провернув через мясорубку семенники и проэкстрагировав этот фермент физиологическим раствором. Фермент гиалуронидаза является действующим началом препарата ПАС «Г» (порошкообразные ацетонированные семенники «говяжьи»). Из этого препарата готовят маточный раствор: 5 г раствора настаивают при комнатной температуре не менее 3 ч в 10 мл стерильного физиологического раствора (6–9 г NaCl на 1 л/воды). Маточный раствор ПАС «Г» можно хранить в холодильнике 5–7 суток. Для обесклеивания этот раствор разбавляют в 10 раз водой.
Можно обесклеивать икру раствором в составе: 1 г NaCl и 3 г химически чистой мочевины на 1 л воды. После обесклеивания икру обрабатывают в растворе танина (0,1–1,6 г/л).
Опудривание клейкого слоя икры осуществляют, промывая ее водой с илом, крахмалом или тальком. Часто для обесклеивания достаточно бывает промыть икру 1 %-ным раствором поваренной соли.
Хорошие результаты дает обесклеивание молоком, разбавленным в 10–20 раз водой. Икру орфы и золотой рыбки обесклеивают в этом растворе в течение 1 ч, постоянно перемешивая куриными перьями или барботируя воздухом. Если на 1 л раствора добавить 3 г поваренной соли, икра лучше набухает, становится прочнее на раздавливание и при инкубации в обычной пресной воде дает значительно меньший отход.
При инкубации икры воду в нерестовике дезинфицируют, добавляя в нее в концентрации 0, 5–2 мг/л метиленового синего, риванола, малахитового зеленого, фиолетового К, оксалата ярко-зеленого, трипафлавина или эрициклина. При наличии в нерестовике растений концентрацию метиленового синего увеличивают, так как основная его часть уходит из воды в растение.