Микроразмножение
Размножение ванили in vitro необходимо для получения однородных, свободных от болезней ростков и сохранения генетических ресурсов. Размножение in vitro с использованием апикальной меристемы стандартизовано для крупномасштабного размножения здоровых и генетически стабильных растений (Cervera and Madrigal, 1981; George and Ravishankar, 1997; Kononowicz and Janick, 1984; Minoo, 2002; Minoo et al., 1997; Philip and Nainar, 1986; Rao et al., 1993b). Стандартизовано in vitro размножение V. tahitensis (Mathew et al., 2000) и исчезающих видов ванили, таких как V. wightiana, V. andamanica, V. aphylla и V. pilifera (Minoo et al., 2006b), чтобы защитить эти виды от исчезновения.
Сообщалось о методах клонального размножения для эффективного размножения V. planifolia путем индукции множественных побегов из эксплантатов пазушных зачатков (рис. 5.4) с использованием полутвердой среды МС с добавлением БА (2 мг/л) и α-нафталинуксусной кислоты (НУК, 1 мг/л) (George and Ravishankar, 1997). Множественные побеги переносили в перемешиваемую жидкую среду МС с БА в концентрации 1 мг/л и НУК в концентрации 0,5 мг/л в течение 2–3 недель, а затем культивировали на полутвердой среде. Используя этот метод, в среднем от одного эксплантата пазушной почки было получено 42 побега в течение 134 дней. Было обнаружено, что использование промежуточной жидкой среды способствует увеличению количества побегов.
РИСУНОК 5.4. Микроразмножение V. planifolia.
В другом исследовании (Minoo et al., 1997) оценивался перенос эксплантов на среду МС, содержащую различные уровни цитокинина (БА) и ауксина (индолмасляная кислота, ИМК), для пролиферации (таблица 5.1). Инициирование роста уже существующих почек in vitro может быть индуцировано в среде МС с низким содержанием цитокинина. Однако, комбинация цитокининов и ауксина способствовала образованию множественных побегов. Идеальной средой для размножения была МС с добавлением БА (1 мг/л) и ИМК (0,5 мг/л). В этой среде за 90 дней культивирования индуцировалось в среднем 15 множественных побегов (рис. 5.4). Узловые сегменты давали лучший ответ: в среднем 15 побегов на культуру по сравнению с кончиками побегов, которые давали в среднем семь побегов на культуру (Minoo, 2002). Питательные среды и условия, благоприятные для микроразмножения V. planifolia, подходили для других родственных видов, таких как V. andamanica, V. aphylla (рис. 5.5) и V. pilifera. Количество индуцированных побегов у разных видов варьировало (таблица 5.2). Примерно 12-15 побегов на культуру могут быть индуцированы у V. planifolia, и 8-10 побегов у V. aphylla. Среди изученных видов наименьшая скорость размножения наблюдалась у V. pilifera. Удлиненные побеги, из среды для пролиферации, укореняли на среде МС, содержащей 30 г/л сахарозы, без регулятора роста (рис. 5.6). Приживаемость проростков с хорошо развитыми корнями in vitro составила более 70%. Возникновение корней на микрочеренках начиналось между четырьмя и шестью днями после культивирования, достигая 100% культуры через две недели, что указывает на то, что оптимальные эндогенные уровни регуляторов роста растений, необходимых для укоренения, уже присутствовали в ткани/эксплантатах.
| Концентрация регуляторов роста | Частота множественных побегов (%) | Среднее количество всходов/культура ± станд.откл. | |||
|---|---|---|---|---|---|